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肝素磁珠具有快速的磁响应性、丰富的肝素密度、极高的物理化学稳定性等特点。一方面，可作为亲和层析的配基，能够与生长因子及抗凝血酶AT Ⅲ等生物分子发生特异性结合；另一方面，由于表面带有大量负电性硫酸根离子基团，可作为一种阳离子交换介质，在一定pH条件下，与带正电的蛋白具有强的结合能力。

与传统柱层析纯化方式相比，肝素磁珠无需对粗蛋白样品进行预处理（如：反复繁琐的离心，费时费力的过滤操作），此外，无需控制流速及柱压，不需要昂贵的层析设备。对于熟练的操作者来说，在很短时间内就能完成高纯度目的蛋白的提取，且能轻松实现多个样品的平行处理，实现高通量的蛋白纯化。

肝素磁珠适用于抗凝血因子III、凝血因子、核酸结合蛋白、脂蛋白、干扰素、类固醇受体、凝血酶及类凝血酶等生物大分子的分离纯化。

• 丰富的结合位点，加强了与配体的特异性结合。
  
• 磁响应速度快，减少操作时间。
  
• 磁珠具有良好的分散性和重悬性，提高操作的便捷性。
  
• 配基具有良好的物理化学稳定性，提高了实验结果的可靠性及可重复性。

• 蛋白结合量与目标蛋白特性相关，此处仅作参考值；
  
• 1mL磁珠悬液中含有100μL磁珠。

• 本制品不宜冷冻、干燥或离心操作。冷冻、干燥和离心等操作会引起磁珠团聚，不易于重悬和分散，并且影响磁珠表面功能基团的化学活性。
  
• 在使用本制品前，请务必充分振荡或超声使磁珠保持均匀的悬浮状态。
  
• 使用过程中可根据需求，用纯化水或缓冲液磁吸洗涤磁珠2～3次，以去除保存液中乙醇。
  
• 本制品需与磁性分离设备配套使用。
  
• 盐浓度与pH值均会影响特异性蛋白的结合与洗脱，客户需自行摸索不同蛋白的结合和洗脱条件，以保证蛋白纯化量和纯度。

• 样品处理：取人血浆1mL加入至1.5mL EP管中，接着加入500μL Binding Buffer，充分混匀。
  
• 磁珠预处理：将肝素磁珠漩涡振荡30 s，使磁珠充分重悬；取1mL 10%（V/V）磁珠悬液置于另一新的1.5mL EP管中。对磁珠悬液进行磁性分离，弃上清液，用1mL Binding Buffer洗涤2次，磁性分离，管中磁珠可直接用于抗体分离。
  
• 蛋白吸附：在步骤2预处理的磁珠管中加入步骤1处理的样品溶液，漩涡振荡均匀，在室温下（约25℃）将EP管置于垂直混合仪混匀15～30min，使样品和磁珠充分接触并吸附，然后进行磁性分离，移弃上清液。
  
• 磁珠洗涤：向EP管中加入1mL Binding Buffer，漩涡振荡重悬磁珠1min后进行磁性分离，移弃上清液；该操作重复3次。
  
  • 根据对洗脱蛋白SDS-PAGE图谱，在Binding Buffer中可适当加入一定浓度NaCl，该步骤可有效的去除非特异性吸附蛋白，使操作者获得更高浓度的目标蛋白。
• 蛋白洗脱：在上述完成磁珠洗涤的EP管中加入0.2mL Elution Buffer，用移液器吹打或者涡旋振荡下迅速重悬，然后在室温下（约25℃）将EP管置于垂直混合仪混匀10～15min后进行磁性分离，收集上清液至新的EP管。
  
• 磁珠再生：向EP管中加入1mL纯化水，漩涡振荡重悬磁珠后进行磁性分离，移弃上清液，重复操作3次；接着改用Binding Buffer洗涤磁珠3次。磁珠多次使用后会有沉淀蛋白、强疏水性蛋白、脂蛋白等杂质非特异性吸附到磁珠上，为了保证磁珠的使用效率，建议进行在位清洗（CIP）。
  
• 在位清洗（CIP）：依次采用0.1M NaOH、8M尿素、纯化水、Binding Bufdfer洗涤磁珠2次；最后加入1mL Storage Buffer(20%乙醇)重悬磁珠，置于2～8℃保存。